На что указывает положительная реакция панди и проба нонне апельта

Исследование спинномозговой жидкости при сифилисе

параллельно с ростом общей заболеваемости сифилисом отмечается увеличение доли случаев нейросифилиса.

Согласно инструкции по лечению и профилактике сифилиса, исследование спинномозговой жидкости необходимо проводить до лечения у больных ранним и поздним скрытым сифилисом при наличии клинических поражений нервной системы, а также при скрытых и поздних формах нейросифилиса.

Ликворологические обследования при снятии с учета проводятся:

(1) пациентам, лечение которых было начато по поводу раннего и позднего нейросифилиса;

(2) лицам, у которых в процессе клинико-серологического контроля появились какие-либо клинические проявления специфического поражения нервной системы (острый сифилитический менингит, менинговаскулярный сифилис, сифилитический менингомиелит, спинная сухотка (tabes dorsalis), сифилитическая гумма, сифилитические невриты и полиневриты, сифилитическое поражение зрительных нервов, сифилитическое поражение слуховых нервов, сифилитический менингомиелит, прогрессивный паралич);

(3) лицам с серологической резистентностью, сохраняющейся к концу срока клинико-серологического наблюдения.

Спинномозговую жидкость для исследования получают путем поясничного прокола между III и IV или IV и V поясничными позвонками при помощи длинных тонких пункционных игл (диаметром от 0,4 до 0,8 мм и длиной 10-12 см). Ликвор по 3-4 мл собирают в две стерильные пробирки (не более 8-10 мл). Необходимо следить, чтобы жидкость вытекла и канюли каплями (20-40 капель в минуту). Если жидкость после извлечения мандрена из иглы вытекает струей, то надо незамедлительно ввести мандрен обратно на небольшую глубину с целью регулировки скорости вытекания жидкости. Если первые капли ликвора окрашены кровью, следует изменить положение иглы (продвинуть глубже или слегка вытянуть). Затем прозрачную жидкость собирают в другую пробирку (порция ликвора с примесью крови не исследуется). После пункции место прокола обрабатывается 3-5%-ной йодной настойкой и накладывают стерильную повязку. Чтобы предупредить осложнения, больного укладывают на кровать животом вниз (ножной конец кровати приподнимают на 20-30 см). Спустя 3-4 часа ему разрешается повернуться набок. Постельный режим соблюдается 24-48 часов. Больному рекомендуется обильное питье и голод в течение 6-8 часов после пункции.

Одну порцию спинномозговой жидкости (3-4 мл) направляют в клинико-биохимическую лабораторию для исследования цитоза, содержания белка, постановки глобулиновых (Панди, Нонне-Аппельта, Вейхбродта или Таката-Ара) и коллоидных (Ланге или парафиновой) реакций.

Реакция Нонне-Апельта.

С помощью насыщенного раствора сульфата аммония на границе соприкосновения реактива со спинномозговой жидкостью образуется белковое кольцо. После стряхивания, а следовательно, смешения жидкостей получается опалесценция или помутнение различной интенсивности.

Реакцию Нонне-Апельта оценивают по четырехбалльной системе: слабо положительная (+) – опалесценция слабо заметна, умеренно положительная (++) – незначительное помутнение, положительная (+++) – выраженное помутнение и резко положительная (++++) – интенсивное помутнение. Росс-Джонс несколько модифицировал эту реакцию.

Обратите внимание

Он предложил не смешивать спинномозговую жидкость с насыщенным раствором сульфата аммония, а осторожно сверху наливать ее из пипетки каплями на более концентрированный реактив. Причем спинномозговая жидкость готовится в различных степенях разведения.

Через 3 мин определяется степень помутнения кольца, образовавшегося на границе жидкостей и раствора сульфата аммония. Кольцо опалесценции образуется при содержании белка в спинномозговой жидкости в концентрации 3 г/л.

Реакция Панди осаждает не только глобулины, но и все белки спинномозговой жидкости.

Заключается в том, что на часовое стеклышко, которое ставится на темном фоне, наносят 10-15 капель 10 % раствора карболовой кислоты, затем одну каплю спинномозговой жидкости. Реакция отличается высокой чувствительностью и определяется по интенсивности помутнения, образовавшегося на месте соприкосновения жидкости и реактива, по истечении 3 мин.

Реакция Вайнброхта производится таким образом, что к 7 частям спинномозговой жидкости прибавляют 3 части 0,1 % раствора серебра нитрата, а затем встряхивают. При этом наступает различной степени помутнение, по которому судят о содержании белковых веществ (не только глобулинов).

Таката-Ара реакция. Коллоидная реакция. При добавлении к подщелоченному ликвору растворов сулемы и фуксина в норме наблюдается смесь фиолетового цвета. При просветлении жидкости и выпадении осадка реакцию обозначают как метасифилитическую (прогрессивный паралич), при окрашивании в красный цвет – как менингитическую.

Реакция Ланге основана на способности патологически измененного ликвора при смешении его с коллоидными растворами менять дисперсность раствора и тем самым его цвет; при нормальном ликворе пурпурно-красный цвет раствора не меняется. При патологии различают несколько типов кривой изменения цвета.

Первый тип – паралитический: при постепенно повышающихся степенях расщепления ликвора в пробирках обесцвечивание происходит только в первых 5 пробирках с довольно крутым возвращением к норме. Такой ход реакции свойствен прогрессивному параличу.

Для других форм нейросифилиса более характерен сифилитический зубец – умеренное изменение цвета во 2-5-й пробирке. Второй тип кривой – менингитический (острые менингиты): изменение цвета отмечается со 2-3-й пробирки, достигает максимума в 6-й и 7-й пробирках, после чего круто возвращается к норме.

При других заболеваниях центральной нервной системы реакция Ланге является достаточно типичной и не может служить подсобным диагностическим средством.

Вторую порцию ликвора (3-4 мл) отправляют в серологическую лабораторию для проведения реакции Вассермана с кардиолипиновым и трепонемным антигенами, РИФ и РИБТ.

Реакция Вассермана (реакция связывания комплемента, РСК) с трепонемным и кардиолипиновым антигенами применяются для подтверждения диагноза сифилиса при наличии активных проявлений болезни, для обследования лиц, бывших в пловом контакте с больным сифилисом, выявления латентного (скрытого) сифилиса, эффективности проводимой терапии.

При обследовании больных психиатрических и неврологических стационаров. Доноров и беременных, включая лиц, направляемых на искусственное прерывание беременности. Кровь для исследования берут в количестве 5-7 мл из локтевой вены стерильной иглой. У грудных детей кровь берут из височной вены или из надрезов на пятке. Взятие крови производят строго натощак.

И оставляют ее в чистых сухих пробирках на 2-3 ч при комнатной температуре для свертывания. Постановку КСР и специфических реакций производят в серологических лабораториях кожно-венерологических учреждений. Принцип РСК заключается в том, что реагины, находящиеся в сыворотке крови больных сифилисом, обладают свойством вступать в соединения с различными антигенами.

Важно

Образовавшиеся комплексы сортируют введенный в реакцию комплемент. Для индикации комплекса реагины–антиген–комплемент используется гемолитическая система (смесь эритроцитов барана с гемолитической сывороткой). При наличии комплекса эритроциты выпадают в осадок. Что заметно не вооруженынм глазом.

Выраженность гемолиза обозначается врачом ключами: резко положительная 4+, положительная 3+, слабоположительная 2+ ли 1+ и отрицательная. Кроме качественной оценки этих реакций имеется и количественная, имеющая значение в диагностике некоторых стадий сифилиса и при контроле за эффективностью терапии.

В настоящее время в качестве антигенов рекомендовано применять кордилипиловый антиген (экстракт из сердца быка, обогащенный холестерином и лецитином) и трипонемный антиген (обработанная ультразвуком взвесь апатогенных культуральных трепонем).

Реакция связывания комплемента с кардиолипиновым и трепонемным антигенами становится положительной через 2-4 недели постепенно нарастает и достигает максимума (1:160 – 1:320 и выше) при вторичном свежем сифилисе. Затем титр реагинов постепенно падает и при вторичном рецидивном сифилисе обычно не превышает 1:180 – 1:120.

среди больных с третичным сифилисом указанные реакции дают положительный результат только у 70%.

Следует подчеркнуть, что КСР не являются строго специфичным для сифилиса и в ряде случае в может давать ложноположительные (неспецифические) результаты, они могут получаться в связи с техническими ошибками (полный гемолиз, нестерильное взятие крови, недостаточная квалификация лаборантов).

Ложные реакции наблюдаются у больных лепрой, малярии, иногда с ситуационными заболеваниями, новообразованиями, туберкуле, заболеваниями печени, при приеме лекарственных препаратов, а также во время беременности. При менструациях и т.д.

Не рекомендуется исследовать кровь в течение первой недели после вакцинации, травм, хирургических вмешательств, при лихорадочных состояниях в течение первых 2 –х недель после родов, у новорожденных в первые 10 дней жизни, т.к. физико- химические изменения в сыворотке крови при этих состояниях могут быть сходы с теми, которые наблюдаются у больных сифилисом.

РИФ основана на непрямом методе определения флюоресцирующих антител. Антигеном в этой реакции служит взвесь убитых культурных бледных трепонем, фиксированная к предметным стеклам на которые наносят исследуемую и антивидовую флюоресцирующую сыворотки. Результаты РИФ определяют под люминесцентным микроскопом путем оценки свечения трепонем в препарате. При положительном результате трепонемы имеют желтовато-зеленое свечение, степень которого, обозначают плюсами от 1+ до 4+, при отрицательных результатах трепонемы не светятся. РИФ в настоящее время ставят в нескольких модификациях (РИФ – abs, РИФ– 200).

РИБТ, предложенная в 1949 г.Р. Нельсоном и М. Мейером, основана на феномене обездвиживания бледных трепонем антигенами сыворотки крови больного в присутствии комплемента. В качестве антигена для РИБТ используют взвесь бледных живых трепонем, полученных от зараженных сифилисом кроликов.

Совет

Подсчет утративших подвижность (иммобилизированных) трепонем ведут под микроскопом. Результаты реакций оценивают в процентах от 0 до 20% – отрицательный, от 21 до 31% – сомнительная, от 31 до 50% – слабоположительная, от 51 до 100% – положительная.

РИБТ становится положительным в конце первичного периода сифилис а и остается таковой в течениие всех периодов этого заболевания, а иногда и после полноценного противосифилического лечения.

РИБТ может давать ложноположительные результаты, если в исследуемой сыворотке содержаться трепонемоционные вещества (антибиотики – пенициллин, тетрациклин), вызывающие неспецифическую иммобилизацию бледных трепонем. Поэтому нельзя исследовать кровь на эту реакцию ранее 2 недель после окончания прима антибиотиков.

Для проведения специфических серологических реакций (РИФ и РИБТ) кровь берут из локтевой вены натощак в количестве 5-10 мл.

Шприц и иглу после стерилизации промывают изотоническим раствором хлорида натрия, и кровь вливают в сухую пробирку для исследования на РИФ и в стерильную пробирку для исследования на РИБТ.

Постановка специфических серологических реакций на сифилис производится в специализированных лабораториях кожно- венерологических учреждений.

Результаты ликворологического исследования оцениваются по шкале Робустова, дополненной последними данными о РИФ и РИБТ со спинномозговой жидкостью. Согласно этой классификации, различают четыре степени изменений спинномозговой жидкости у больных сифилисом.

I степень – незначительные изолированные или комбинированные изменения спинномозговой жидкости.

Изменения спинномозговой жидкости считаются незначительными, когда определяются: цитоз более 8 клеток в 1 мм3, белок свыше 0,33%, реакции Нонне-Апельта (++), реакция Панди (+++), реакция Ланге больше двоек или одна тройка, РВ слабоположительна, РИФ положительна.

Если обнаруживается одно из таких изменений, говорят об изолированных изменениях ликвора, если же два – о комбинированных. чаще всего они выявляются до лечения у больных первичным и вторичным сифилисом, сосудистым нейросифилисом, у некоторых больных, недавно закончивших лечение нейросифилиса, а также у отдельных обследуемых после контрольного срока наблюдения.

II степень – значительные изменения ликвора при отрицательных результатах РВ и РИБТ.

Читайте также:  Что такое баллизм и гемибаллизм: причины, симптомы и лечение

Отмечается белково-клеточная диссоциация (цитоз в пределах нормы или слегка повышен, количество белка резко повышено, глобулиновые коллоидные реакции положительны) или клеточно-белковая (плеоцитоз и незначительное повышение белка, реакция Панди и Нонне-Аппельта слабоположительны или отрицательны).

Такие изменения чаще обнаруживаются у больных различными клиническими формами сифилитического менингита, менинговаскулярным сифилисом.

III степень – резкие изменения спинномозговой жидкости (клеточно-белковая или белково-клеточная диссоциация, глобулиновые реакции чаще положительны) и положительные результаты РВ, РИБТ и РИФ.

Определяется у больных запущенным ранним скрытым или острым ранним сифилитическим менингитом, менинго-васкулярным сифилисом, поздним мезенхимальным нейросифилисом и у некоторых больных спинной сухоткой.

IV степень – паралитичсекий тип изменений спинномозговой жидкости: высокий плеоцитоз или большое содержание белка, глобулиновые реакции, РВ, РИФ, РИБТ положительны, кривая Ланге паралитичсекого типа.

Обратите внимание

Такие изменения ликвора наиболее характерны для больных прогрессивным параличом, табопараличом, в меньшей степени – для больных спинной сухоткой и в еще меньшей степени – для больных поздним мезенхимальным нейросифилисом.

Источник: http://doctorspb.ru/articles.php?article_id=1282

Лабораторные методы

Диагностические
лабораторные исследования в психиатрии
направлены на оценку соматического
состояния больного, контроль за ним в
процессе лечения, а также на выявление
соматических заболеваний, обуславливающих
психические расстройства. Большинство
применяемых в психиатрии лабораторных
методов не отличаются от таковых
общесоматической медицины.

Однако
существует ряд специфических методов,
с помощью которых можно с большой
точностью поставить этиологический
диагноз “в пробирке”.

К ним относятся
коллоидные реакции, применяемые для
диагностики сифилиса, выявление нарушений
обмена аминокислот при олигофрениях,
установление содержания наркотических
средств в биологических средах, а также
определение уровня психотропных
препаратов в крови для контроля лечения.

I. Определение содержания психоактивных веществ в моче

Применяется
с целью установления факта однократного
приема психоактивных веществ, а при
повторных определениях – для установления
злоупотребления ими и наличия у пациента
зависимости.

Сроки, в течение которых
эти вещества могут быть обнаружены
после последнего приема колеблются от
нескольких часов до месяца.

Ориентировочное
время, в течение которого препарат можно
обнаружить в моче приведено в таблице:

Вещества Время
Алкоголь 7-12 ч
Фенамин 48 ч
Барбитураты 24 ч (непролонгированного действия)3 нед (пролонгированного действия)
Бензодиазепины 3 дня
Кокаин 6-8 ч (метаболиты – 2-4 дня)
Кодеин 48 ч
Героин 36-72 ч
Марихуана 3 дня – 4 нед (зависит от частоты использования)
Метадон 3 дня
Метаквалон 7 дней
Морфин 48-72 ч
Фенилциклидин 8 дней
Пропоксифен 6-48 ч
ЛСД 12 ч

II. Основные реакции спинномозговой жидкости

Реакция Панди

Методика
определения
основана на определении степени
помутнения СМЖ при добавлении ее к 15%
раствору карболовой кислоты. На предметное
стекло наносят несколько капель реактива
Панди и рядом 1-2 капли ликвора.

При их
смешении появляется помутнение различной
степени выраженности (в зависимости от
количества содержащегося в СМЖ белка).
Результат определяется на темном фоне
через 2 мин.

Степень помутнения обозначается
плюсами (+, ++, +++, ++++) или (по системе СИ)
цифрами (1,2,3).

Диагностическое
значение.
Дает общее представление о содержании
белка в ликворе, не являясь специфической
глобулиновой пробой.

Реакция
Нонне-Аппельта.

Методика
определения
основана на
осаждении глобулинов насыщенным
раствором сернокислого аммония. В
пробирку, содержащую 0,5-1,0 мл реактива
наслаивают равное количество СМЖ. Через
2 мин на границе растворов появляется
белое кольцо. Затем пробирку встряхивают
и определяют степень помутнения, выражая
ее плюсами. Помутнение появляется уже
при содержании белка 0,033 г/л.

Диагностическое
значение.
Дает относительное представление о
нормальном или патологическом содержании
глобулинов, количество которых особенно
увеличивается при дегенеративных и
хронических воспалительных заболеваниях.

Реакция
Ланге

коллоидным золотом)

Методика
определения.
При добавлении патологического ликвора
к высокодисперсному коллоидному раствору
хлорного золота происходит коагуляция,
осаждение частиц и изменения цвета
раствора. В каждую из десяти пробирок,
содержащих СМЖ в различных разведениях
(1:10, 1:20, 1:40 и т.д.), прибавляют по 2,5 мл
коллоидного раствора.

Важно

Результат наблюдают
спустя сутки. При нормальном ликворе
цвет раствора остается красным во всех
пробирках (возможно лишь небольшое
снижение его интенсивности в 3-5-й
пробирках).

При патологических состояниях
цвет меняется, изменение цвета оценивается
цифрами 0 – красный, 1 – красно-фиолетовый,
2 – фиолетовый, 3 – сине-фиолетовый, 4 –
синий, 5 – голубой, 6 – белый.

Диагностическое
значение.
Различают нормальный, дегенеративный
(изменение цвета в левой половине ряда
– наблюдается при сифилисе, опухолях,
рассеянном склерозе), воспалительный
(изменение цвета в правой половине ряда
– наблюдается при менингитах) и смешанный
типы кривых (изменение цвета в левой и
средней частях ряда наблюдается при
смешанных менинго-паренхиматозных
поражениях).

Основные
физические и химические показатели
люмбальной СМЖ:
бесцветная,
прозрачная, рН = 7,4-7,6, общий белок
– 0,22-0,33 г/л, альбумины – 46,6-52,8‰,
глобулины – 53,4-47,2‰, фибриноген –
0,0019-0,0030 г/л, мочевина – 1,0-3,3 ммоль/л,
глюкоза – 2,5-4,44 ммоль/л, холестерин
– 0,002-0,011 ммоль/л, общий азот – 11,4-15,7
ммоль/л, остаточный азот – 8,6-13,6 ммоль/л.

III.
Определение содержания психотропных
препаратов в плазме.


Имеет
практический смысл в тех случаях, где
существует близкая к линейной зависимость
между содержанием препарата в плазме
в лечебным эффектом и где известно
«терапевтическое окно», то есть тот
диапазон концентраций, при котором
препарат оказывает наибольший
терапевтический эффект. Используется
для препаратов лития и некоторых
трициклических антидепрессантов в
терапии расстройств настроения.

Определение
содержания лития: кровь берется через
12 часов после последнего приема препарата
внутрь (обычно утром после вечернего
приема); частота определений в начале
лечения – 1-2 раза в неделю, после
установления дозы – 1 раз в месяц. Для
поддерживающей терапии биполярного
аффективного расстройства необходима
концентрация 0,6-1,0 мг-экв/л, для
купирования маниакальных состояний –
1,0-1,5 мг-экв/л.

Трициклические
антидепрессанты: «терапевтическое
окно» для имипрамина (мелипрамина) –
200-250 нг/мл,
триптизола (амитриптилина) – 120-250,
нортриптилина – 50-150, дезипрамина
(петилила) – 125-250 нг/мл.

Источник: https://StudFiles.net/preview/3832767/page:12/

Сайт преподавателя МКЛИ Байбулатовой Светланы Андреевны – Химическое исследование ликвора

Определение белка в ликворе

Белки – важная составная часть ликвора. Их количественное и качественное отклонение от нормы указывает на органическое поражение ЦНС.

Глобулиновые реакции

Проба Панди.

Унифицированный метод определения глобулинов карболовой кислотой.

Принцип: осаждение глобулинов, появление преципитата (мути), при добавлении к насыщенному раствору карболовой кислоты жидкости, содержащей белок.

Реактивы: насыщенный раствор карболовой кислоты (100 г карболовой кислоты растворяют в 1 л воды, встряхивают и оставляют на стуки в термостате при температуре 370С, затем раствор выдерживают 5-6 суток при комнатной температуре). Для постановки реакции используют надосадочную жидкость.

После пребывания при комнатной температуре в течение 7 дней надосадочную жидкость сливают и используют.

Ход определения:

На часовое стекло, помещённое на чёрную бумагу, наливают 1 мл реактива и по краю наслаивают 1-2 капли ликвора.

Оценка полученных результатов:

Оценка производится по 4-х крёстной системе:

При положительном результате в месте соприкосновения реактива с ликвором образуется молочно-белое облачко, переходящее в муть от лёгкой опалесценции до хлопьев.

Совет

Образование хлопьев (значительное помутнение) ++++, умеренное +++, заметная опалесценция ++, лёгкая опалесценция +, отсутствие помутнения (-).

Проба Нонне-Апельта

Унифицированный метод определения глобулинов

Принцип: соли в определённой концентрации избирательно осаждают глобулины.

Реактивы: насыщенный раствор сульфата аммония.

Ход определения:

1. В химическую пробирку вносят 0,5 мл ликвора и 0,5 мл реактива.

2. Содержимое пробирки хорошо перемешивают.

3. Контролем служит 1 мл дистиллированной воды.

4. Пробы смотрят на чёрном фоне.

Оценка полученных результатов:

Результат смотрят в течение 3-х минут, так как после 3-х минут помутнение может произойти в нормальном ликворе.

Оценка производится по 4-х крёстной системе:

– Слабая опалесценция (+)

– Заметная опалесценция (++)

– Умеренное помутнение (+++)

– Значительная мутность (++++)

Клиническое значение: Проба даёт относительное представление о содержании глобулинов в ликворе.

Количественное определение белка

Проба Бранберга-Робертса-Стольникова

Принцип: коагуляция белка кислотой с образование кольца.

Реактивы: реактив Ларионовой

Ход определения:

Ликвор предварительно разводят (физиологическим раствором) в зависимости от результата пробы Панди, кроме отрицательной пробы.

1. В агглютинационную пробирку наливают 1 мл реактива Ларионовой.

2. Осторожно по стенки пробирки наслаивают ликвор.

Оценка полученного результата пробы: пробирку с ликвором смотрят на чёрном фоне.

Появление нитевидного кольца на 3 минуте соответствует 0,033 г/л белка.

Полученный результат умножают на степень разведения. При положительной пробе Панди результат умножают при (+) на 10, при (++) на 20, при (+++) на 30, при (++++) на 40.

Определение белка с сульфосалициловой кислотой и сульфатом натрия

Принцип: интенсивность помутнения при коагуляции белка кислотой пропорциональна его концентрации.

Реактивы:

1. 6% раствор сульфосалициловой кислоты.

2. 14% раствор безводного сульфата натрия.

3. Рабочий раствор ( свежеприготовленная смесь равных объёмов реактивов 1 и 2).

4. Стандартный раствор альбумина.

Оборудование: ФЭК.

Ход определения:

1. В пробирку наливают 5 мл свежеприготовленного рабочего раствора.

2. Добавляют 0,5 мл ликвора. Тщательно перемешивают и оставляют на 10 минут.

3. Нефелометрируют на ФЭКе в кювете с рабочей шириной 1 см против контроля (0,9% раствора хлорида натрия (физ. раствора)). Длина волны 410-480 нм (сине-фиолетовый светофильтр).

4. Расчёт производят по калибровочному графику.

Примечание:

1. Если муть начинает оседать перед измерением на ФЭКе, то пробирку следует тщательно встряхнуть.

2. Перед опытом целесообразно поставить пробу Панди, и если результат реакции оценивают в «+++» или «++++», то перед количественным исследованием ликвор надо развести изотоническим раствором хлорида натрия и при расчёте учесть степень разведения.

Норма:

В ликворе из желудочков мозга: 0,12 – 0,2 г/л.

В ликворе из цистерн: 0,1 – 0,22 г/л.

В ликворе из поясничной области: 0,22 – 0,33 г/л.

Клиническое значение: повышенное содержание белка в ликворе отмечается при нарушение гемодинамики, воспалительных процессах, органических поражениях ЦНС и оболочек мозга.

Клиническое значение определения белка в ликворе:

При исследовании ликвора очень часто определяют содержания белка. В норме ликвор беден белками. Увеличение содержания общего белка в ликворе служит показателем патологического процесса, но и нормальные значения не исключают этого.

Считают, что в раннем детском возрасте концентрация белка в ликворе более высокая вследствие незрелости ГЭБ (гемато-энцефалистического барьера).

Обратите внимание

Увеличение концентрации белка в ликворе – гиперпротеинрахия – отмечается при гнойных менингитах, полиомиелите, кровоизлияниях в субарахноидальное пространство, арахноидитах, абсцессах мозга.

Уменьшение количества общего белка в ликворе – гипопротеинрахия – редкое явление. Оно наблюдается при повышенном внутричерепном давлении (при гидроцефалии, пневмоэнцефалографии).

Исследование состава белков и их коллоидной устойчивости пользуются для дифференциации воспалительных и дегенеративных процессов в головном и спинном мозге. Это исследование имеет значение, главным образом, для диагностики сифилиса ЦНС.

Определение глюкозы в ликворе

Читайте также:  Стертая (легкая) дизартрия у детей: лечение и коррекция, прогноз

В норме здорового человека содержится около 3,3 ммоль/л (2,49 – 4,16 ммоль/л) глюкозы. Источником является глюкоза крови.

Уменьшение уровня глюкозы в ликворе – гипогликорахия – является важным диагностическим признаком и наблюдается при бактериальном и гнойном менингитах. Выраженная гипогликорахия (до 0,0 ммоль/л) встречается при опухолях мозга.

Увеличение уровня глюкозы в ликворе – гипергликорахия – встречается редко. Это бывает при сахарном диабете, менингоэнцефалитах, ишемических нарушениях мозгового кровообращения.

Определение хлоридов в ликворе

Содержание хлоридов в ликворе в норме 115 – 125 ммоль/л.

Гипохлоррахия – уменьшение концентрации хлоридов в ликворе, отмечается при менингитах.

Гиперхлоррахия – увеличение концентрации хлоридов в ликворе, встречается при энцефалитах и эпилепсии.

Клеточные элементы ликвора

В норме спинномозговая жидкость (ликвор) бедна клеточными элементами. Они представлены лейкоцитами (лимфоцитами). Эритроциты отсутствуют.

Количество клеток, содержащихся в единице объёма ликвора, называется цитозом.

Диагностическую ценность представляет не только подсчёт общего числа клеток в единице объёма ликвора, но и определение их вида.

Важно

Из клеточных элементов в норме в ликворе содержаться только лимфоциты. При различных заболеваниях могут встречаться все клетки, входящие в состав периферической крови и тканевые клеточные элементы.

Из тканевых клеток встречается арахноэндотелий, полибласты, макрофаги и клетки опухолей.

¨ Лимфоциты – клетки округлой формы с круглым гиперхромным ядром, занимающим почти всю клетку. В норме встречаются малые лимфоциты 5 – 6 мкм в небольшом количестве.

¨ Нейтрофильные лейкоциты.

¨ Эозинофильные лейкоциты.

¨ Плазматические клетки – имеют округлую форму и круглые гиперхромные глыбчатые ядра, цитоплазма базофильная, размеры 6 – 12 мкм. Встречаются только при патологических состояниях.

¨ Арахноэндотелий – это разновидность эпителия, выстилающего мозговые и спиномозговые желудочки и спиномозговой канал. Клетки имеют неправильную форму, крупное овальное или округлое фиолетовое ядро, базофильную цитоплазму.

¨ Полибасты – фагоцитирующие клетки различной величины, неправильной формы с эксцентрично расположенным округлым или овальным тёмно-фиолетовым ядром и резко базофильной вакуолизированной цитоплазмой.

¨ Макрофаги – крупные клетки с круглым или овальным светло-фиолетовым ядром и вакуолизированной цитоплазмой, содержащей разнообразные включения (эритроциты, нейтрофилы, кристаллы).

Макрофаги (липофаги), заполненные жировыми каплями, окрашиваются суданом III в оранжевый цвет, и носят название «зернистых шаров».

Макрофаги появляются в стадии рассасывания воспалительных процессов.

¨ При опухолях центральной нервной системы встречаются клетки, не похожие на ни одну из описанных форм, – атипичные (опухолевые клетки).

Кроме клеточных элементов, при патологии обнаруживаются кристаллы гематоидина, холестерина, билирубина.

При менингитах методом бактериоскопии могут быть выявлены возбудители заболеваний: микобактерии туберкулёза, менингококки, стрептококки, стафилококки, пневмококки и другие.

Изучение клеточного состава имеет значение для диагностики различных видов менингитов и других заболеваний (таблица 1). При гнойных менингитах увеличение количества клеточных элементов происходит главным образом за счёт нейтрофилов. При серозном и туберкулёзном менингитах – плеоцитоз лимфоцитарный.

Таблица 1 Плеоцитоз при различных заболеваниях

Число клеток в 1 л Заболевания
Больше 3,0·109/л Острый бактериальный менингит
Около 3,0·109/л Актиномикоз ЦНС, абсцесс мозга
От 1,0 до 3,0·109/л Коксаки, аденовирусный менингоэнцефалит
От 0,3 до 3,0·109/л Туберкулёзный менингит
Меньше 1,0·109/л Герпес, энцефалит, нейросифилис
Меньше 0,15·109/л Миелит, субдуральная гематома, мозговое кровоизлияние

Дифференцирование клеток ликвора (цитограмма)

При изучении ликворных клеток необходимо не только их точное число, но и вид. Для этого 2-3 мл свежего ликвора обогащают путём центрифугирования. Из осадка делают мазок, фиксируют его, после чего окрашивают. Полученный мазок микроскопируют с иммерсионной системой и изучают клетки ликвора.

Изучение цитограммы имеет большое значение для диагностики, прогнозирования и лечения ряда заболеваний (таблица 2).

В норме в ликворе встречаются только малые лимфоциты, моноциты, клетки эпендимы, клетки мягкой и паутинной оболочек.

При патологических условиях могут встречаться все виды форменных элементов крови, макрофаги, опухолевые клетки, лейкозные клетки.

Нормальная цитограмма не исключает наличия патологического процесса в ЦНС.

Большое значение имеет динамическое изменение цитограммы ликвора в ходе воспалительного процесса.

Совет

Присутствие только нескольких лейкозных клеток в ликворе говорит о вовлечении ЦНС в патологический процесс.

Установлено, что даже одна единственная опухолевая клетка подтверждает наличие неопластического процесса.

Бактериологическое исследование ликвора

Для обнаружения возбудителя мазки готовят после центрифугирования из осадка, высушивают на воздухе, фиксируют над пламенем горелки и окрашивают по Граму, также делают посевы на питательные среды сразу же после пункции, пока ликвор не остыл.

При окраске по Граму можно обнаружить менингококки (грамотрицательные диплококки), стрептококки и стафилококки (грамположительные).

Делают препараты из фибриновой сеточки, препарат высушивают, фиксируют и окрашивают по Циль-Нильсену для обнаружения микобактерий туберкулёза.

Источник: http://mkli-bioximia.com/index/khimicheskoe_issledovanie_likvora/0-60

Биохимическое исследование

БИОХИМИЧЕСКОЕ ИССЛЕДОВАНИЕ

Общее количество белка определяют по методу Роберте — Стольникова — Брандберга, в норме количество его у взрослых 0,2—0,3 г/л, у детей больше. Реактив — 1% раствор азотной кислоты в насыщенном растворе натрия хлорида.

В коническую пробирку реактив наливают таким образом, чтобы он попал на дно, а стенки остались сухими. Наклонив сосуд, пипеткой осторожно по стенке приливают жидкость, чтобы она не смешалась с реактивом и осталась сверху.

На границе обеих жидкостей в присутствии белка появляется белое кольцо. Если оно образовалось через 2—3 мин, то это соответствует концентрации белка 0,033 г/л. Если кольцо появляется раньше и оно тонкое — жидкость разводят в 2 раза, раньше и широкое — в 4 раза и т. д.

Обратите внимание

При подсчете умножают на степень разведения. Содержание белка в спино-мозговой жидкости при гнойных менингитах увеличивается.

Для определения глобулиновых фракций ставят реакцию Нонне — Апельта и Панди. Сущность реакции Нонне — Апельта заключается в осаждении глобулинов равным количеством насыщенного раствора сернокислого аммония. Количество глобулинов определяется по появляющейся мути или осадку. Реакцию ставят следующим образом.

В маленькую пробирку с 0,25— 1,0 мл жидкости приливают столько же реактива, встряхивают пробирку и через 3 мин читают результаты — пробирку рассматривают на черном фоне, сравнивая с пробиркой, наполненной водой. Если жидкость прозрачна — проба отрицательная, при помутнении — положительная.

Оценивают реакцию так: слабая опалесценция (+), ясная опалесценция (++), среднее помутнение (+++)> сильное (+ + + + ).

Ганглий

Реакцией Панди широко пользуются в практике, хотя она характерна не только для глобулинов.

Для ее осуществления на предметное или часовое стекло, помещенное на черную бумагу, наливают 0,5—1 мл реактива (100 мл жидкой карболовой кислоты и 1000 мл воды) и сбоку опускают 1 каплю спинномозговой жидкости.

О наличии глобулинов свидетельствует нитевидная муть по контурам капли, либо помутнение. В норме реакции Панди и Нонне — Апельта отрицательные.

Определение глюкозы производят по глюкозооксидазному методу; в норме концентрация глюкозы в спинномозговой жидкости составляет 0,5—0,7 г/л.

Важно

При необходимости определяют содержание хлоридов (у взрослых их 7,0—7,5 г/л, у детей — 6,9—7,3 г/л),, мочевины (в норме — в среднем 0,14 г/л, ставят коллоидные реакции (Таката-Ара, Ланге) и проводят серологическое исследование (при сифилисе, цистиперкозе мозга и других заболеваниях).

Источник: http://spravr.ru/biohimicheskoe-issledovanie.html

Спинномозговая жидкость

Спинномозговая жидкость (синоним цереброспинальная жидкость) — это жидкая среда нервной системы, циркулирующая в субарахноидальном пространстве головного и спинного мозга и в желудочках головного мозга. В образовании спинномозговой жидкости принимают участие главным образом сосудистые сплетения головного мозга (см.).

Спинномозговая жидкость непрерывно вырабатывается и всасывается, обновление ее происходит в течение одних — нескольких суток. Большая часть спинномозговой жидкости циркулирует в боковых, третьем и четвертом желудочках мозга, меньшая часть — в субарахноидальном пространстве.

Нормальная циркуляция спинномозговой жидкости обеспечивается движениями головы, туловища, конечностей, дыхательными движениями, пульсацией мозга.

Спинномозговая жидкость из боковых желудочков поступает через межжелудочковые (монроевы) отверстия в третий желудочек, который посредством мозгового (сильвиева) водопровода сообщается с четвертым желудочком.

Из последнего через среднее отверстие (Мажанди) и боковое отверстие (Лушки) спинномозговая жидкость проходит в заднюю цистерну, откуда распространяется по цистернам основания и выпуклой поверхности головного мозга, а также субарахноидальному пространству спинного мозга.

В норме спинномозговая жидкость бесцветна и прозрачна. Количество ее колеблется от 15 до 20 мл у новорожденных и 100— 150 мл у взрослых. Удельный вес спинномозговой жидкости составляет 1006—1012, реакция слабощелочная (рН равна 7,4— 7,6).

Спинномозговая жидкость состоит из водной части и сухого остатка, в который входят органические и неорганические вещества. Количество белка в спинномозговой жидкости колеблется от 12 до 43 мг%. Белок состоит из альбуминов и глобулинов. Общий азот 16—22 мг%, остаточный азот 12—28 мг%; у детей 17— 26 мг%. Сахар составляет 40—70 мг%.

Совет

Хлориды 680—720 мг%. Обнаруживается незначительное количество липидов, аминокислот, микроэлементов и некоторых других веществ. В спинномозговой жидкости в небольшом количестве содержатся клетки (лимфоциты, встречаются плазматические клетки, моноциты).

У взрослых в 1 мм3 спинномозговой жидкости имеется 1—5 клеток; у новорожденных — 20—25 клеток в 1 мм3, к одному году количество клеток уменьшается до 12—15 клеток в 1 мм3.

Давление спинномозговой жидкости у человека в норме при спинномозговой пункции (см.) в горизонтальном положении составляет 100—150 мм вод. ст. и увеличивается в вертикальном положении до 200—250 мм вод. ст.

Давление, под которым находится в полости черепа спинномозговая жидкость и головной мозг, определяет внутричерепное давление.

Повышение внутричерепного давления, происходящее вследствие увеличения продукции спинномозговой жидкости или нарушения ее оттока, приводит к гипертензионному синдрому, основными признаками которого являются головная боль, рвота, головокружение, застойные соски зрительных нервов, изменение краниограммы.

При различных патологических процессах (опухоли, воспалительные очаги) может наблюдаться нарушение проходимости субарахноидального пространства. Для изучения проходимости субарахноидального пространства используются ликвородинамические пробы Квеккенштедта и Стукея.

При пробе Квеккенштедта во время пункции в течение нескольких секунд надавливают на яремные вены, давление спинномозговой жидкости заметно повышается — проба отрицательна. При нарушении проходимости выше места пункции давление не повышается — проба положительна.

Проба Стукея: во время пункции сдавливают в течение нескольких секунд брюшные вены — давление спинномозговой жидкости повышается приблизительно в 2 раза — проба отрицательна.

Обратите внимание

Если имеется блокада субарахноидального пространства в нижнегрудном, поясничном отделах спинного мозга, давление не повышается — проба положительна.

Внутричерепное давление повышается при воспалительных заболеваниях головного и спинного мозга и его оболочек, а также при объемных процессах. При различных заболеваниях нервной системы меняется состав и свойства спинномозговой жидкости.

В ряде случаев может отмечаться преимущественное увеличение количества клеток или белка.

Клеточно-белковая диссоциация — значительное увеличение количества клеток при неизменном или умеренно повышенном содержании белка — встречается при гнойных и серозных менингитах; для гнойных менингитов характерен нейтрофильный плеоцитоз, для серозных — лимфоцитарный или смешанный с преобладанием числа лимфоцитов. Белково-клеточная диссоциация — увеличение содержания белка при нормальном или несколько увеличенном количестве клеток — встречается при опухолях мозга, абсцессах,   кистозных   арахноидитах.

При исследовании спинномозговой жидкости используются качественные реакции на глобулины, по которым судят о повышенном содержании белковых веществ: реакция Нонне — Апельта и реакция Панди.

Реакцию Нонне — Апельта проводят следующим образом: 0,5 мл спинномозговой жидкости смешивают с 0,5 мл полунасыщенного раствора сернокислого аммония и при этом в зависимости от содержания в спинномозговой жидкости глобулинов меняется прозрачность жидкости.

Читайте также:  Феназепам: передозировка, побочные действия, отравление и смертельная доза препарата

При проведении реакции Панди на часовое стекло наливают 10% раствор карболовой кислоты из него капают одну или несколько капель спинномозговой жидкости. В результате жидкость мутнеет. В зависимости от помутнения эти реакции оцениваются как слабоположителъная (+), положительная (+ + ), ясно положительная (+ + + ) и резко положительная (+ + + + ).

При некоторых инфекционных заболеваниях в спинномозговой жидкости определяются антитела при помощи специфических реакций, например реакций Вассермана и Кана (при сифилисе), реакции Райта (при бруцеллезе) и др. Чрезвычайно важное значение имеет бактериологическое и вирусологическое исследование спинномозговой жидкости с целью выявления различных микробов, туберкулезной палочки, вирусов.

Источник: http://www.medical-enc.ru/17/spinnomozgovaya-zhidkost.shtml

Химическое исследование ликвора

Для проведения данных исследований необходимо следующее оснащение рабочего места:

  1. Пробирки.
  2. Пипетки.
  3. Шпатели и иглы.
  4. Предметные стекла.
  5. Центрифуга.
  6. Газовая или спиртовая горелка.
  7. 50% азотная кислота.
  8. Сернокислый аммоний.
  9. Карболовая кислота.
  10. Хлорное железо.
  11. Лимоннокислый натрий.
  12. Поваренная соль.
  13. Сулема (HgCl2) в разведении 1 : 1000.
  14. Набор для окраски по Цилю-Нильсену и Граму. Компаратор.

Определение сывороточного белка в ликворе

Общее количество белка в ликворе определяют так же, как в моче; расчет результатов производят, умножая 0,033% на степень разведения ликвора либо используя таблицу. Нормальное содержание белка 0,15-0,3%.

Если полученный ликвор содержит примесь крови, то количество белка увеличивается за счет белков крови и тогда необходимо определять «собственный белок» ликвора.

Определение «собственного белка» спинномозговой жидкости по методу А. Ц. Возной

Две пробирки одинакового диаметра ставят в компаратор. В одну из них помещают исследуемый ликвор, а в другую — физиологический раствор. В пробирку с физиологическим раствором добавляют по каплям кровь, взятую из пальца, до получения одинаковой окраски с исследуемым ликвором.

Содержимое обеих пробирок взбалтывают, а затем центрифугируют в течение 10-15 минут. Для определения белка используют прозрачный бесцветный центрифугат из обеих пробирок. Количество белка определяют при помощи способа, видоизмененного С. Л. Эрлихом и А. Я. Альтгаузеном, так же, как в моче (см.

тему «Количественное определение белка в моче»). Так как примесь крови в ликворе увеличивает содержание в нем белка, то расчет количества собственного белка кровянистого ликвора ведут путем вычитания количества белка разведенной крови из количества белка кровянисто окрашенной спинномозговой жидкости.

Важно

Результат представляет собой собственный белок ликвора.

При желтоватой окраске ликвора поступают так: в пробирку с кровью больного, взятой из пальца и смешанной с физиологическим раствором, вносят стеклянную палочку, смоченную насыщенным раствором двухромовокислого капля, при этом жидкость приобретает оттенок, весьма приближающийся к цвету исследуемого ликвора. Разницу в цвете обеих пробирок выравнивают в компараторе, прибавляя физиологический раствор к пробирке, содержащей кровь. Содержимое пробирок используют для определения белка. Расчет количества собственного белка ликвора производят аналогично описанному выше.

Определение «собственного белка» спинномозговой жидкости по методу Панди

Реактив для этой реакции готовят следующим образом.

На технических весах взвешивают 80-100 г карболовой кислоты; приготовленную навеску растворяют в 1 л дистиллированной воды, тщательно размешивают, выдерживают в термостате при температуре 37° в течение 24 часов и периодически взбалтывают, затем раствор выдерживают еще 2-3 суток при комнатной температуре. Реактивом служит прозрачная надосадочная жидкость.

Постановка реакции Панди. Реакцию ставят на предметном, часовом стекле или в пробирке. Результаты ее учитывают через 3 минуты на черном фоне.

На предметном стекле реакция ставится таким образом. Две-три капли реактива Панди помещают на предметное (или часовое) стекло, установленное на черном фоне, и к ним приливают 1-2 капли исследуемого ликвора. Реакцию считают положительной, если через 3 минуты возникает помутнение жидкости.

В зависимости от степени помутнения реакцию учитывают следующим образом: ( + ) — едва уловимое помутнение, возникающее между двумя жидкостями; (+ +) — тонкая беловатая полоска; ( + + +) — ясное интенсивное помутнение; ( + + + +) — интенсивная мутность даже с выпадением хлопьев.

В пробирке реакцию ставят так: к 0,5 мл реактива Панди, помещенного в узкой пробирке, добавляют одну каплю исследуемого ликвора. Учет реакции производят так же, как указано выше.

Между количеством белка и степенью помутнения установлена прямая пропорциональная зависимость. На основании этого разработана методика разведения ликвора для последующего определения в нем количества белка.

Так, если реакция Панди положительная на ( + ), то ликвор разводят 10-15 раз, при ( + + ) — в 15-25 раз, при ( + + + ) — в 25-30 раз, при ( + + + + ) — в 35-70 раз. При появлении интенсивной мути и плотных белых хлопьев по всему реактиву разводят ликвор в 70-100 раз и более. При отрицательной реакции Панди на 50% азотную кислоту наслаивают неразведенный ликвор.

Определение глобулинов в ликворе

Глобулиновая реакция Нонне-Апельта основана на осаждении глобулинов равным количеством насыщенного раствора сернокислого аммония.

Для этой реакции готовят насыщенный раствор NH4SO4: 850 г химически чистого сернокислого аммония растворяют в 1 л горячей дистиллированной воды.

Раствор подогревают до кипения, взбалтывают до полного растворения, оставляют стоять на несколько дней при комнатной температуре, а затем фильтруют. рН раствора должен быть 7-7,1.

Постановка реакции. В пробирку наливают 0,5-1 мл реактива и на него наслаивают равное количество ликвора. На 3-й минуте учитывают результаты, отмечают толщину кольца на границе жидкостей и интенсивность мути после встряхивания пробирки.

Совет

Реакцию учитывают на черном фоне.

Едва заметное кольцо и слабую опалесценцию обозначают одним плюсом ( + ), ясное кольцо и ясную опалесцепцию — двумя плюсами (+ +), плотное кольцо и среднее помутнение — тремя плюсами ( + + +), плотное кольцо и сильное помутнение — четырьмя плюсами (+ + + +).

Реакция Вейхбродта

Реакция основана на осаждении глобулинов сулемой (HgCb) в разведении 1: 1000 (реактив Вейхбродта).

Постановка реакции. Ликвор в количестве 0,7 мл помещают в видалевскую пробирку, сюда же приливают 0,3 мл реактива Вейхбродта.

Содержимое пробирок встряхивают и тотчас же учитывают результат на черном фоне. В положительных случаях появляется помутнение различной степени, которое учитывается так же, как при реакции Нонне-Апельта.

Обычно эта реакция выражена слабее, чем реакция Нонне-Апельта.

Источник: http://ginekolog.my1.ru/publ/klinicheskie_issledovanija/spinnomozgovaya_zhidkost/khimicheskoe_issledovanie_likvora/41-1-0-774

Показатели ликвора при заболеваниях

Ксантохромная окраска (жёлтая, жёлто-серая, жёлто-бурая, зелёная) появляется при желтухе; опухолях мозга, богатых сосудами и близко расположенных к ликворному пространству; кистах; субарахноидальном введении больших доз пенициллина; у новорождённых такая окраска носит физиологический характер.

Красный цвет (эритрохромия) придаёт ликвору неизменённая кровь, которая может появиться в результате травмы, кровоизлияния.

Тёмно-вишневый или тёмно-бурый цвет возможен при гематомах и попадании ликвор жидкости из кист.

Помутнение ликвора возможно при гнойных менингитах, прорыве абсцесса в подпаутинное пространство, полиомиелите, туберкулёзных и серозных менингитах (появление мутности сразу или после стояния жидкости в течении суток). Воспалительные процессы мозговых оболочек сдвигают рН в кислую сторону.

Увеличение белка в ликворе может быть при туберкулёзном, гнойном, серозном менингитах, нарушении гемодинамики, после операций на мозге,

при опухоли мозга, полиомиелите, травме головного мозга с субарахно-идальным кровоизлиянием, нефрите с уремией. При остром воспалении повышаются а-глобулины, при хронических — b- и у-глобулинов.

Положительные реакции Панди и Нонне-Апельта указывают на увеличенное содержание глобулиновой фракции и сопровождают кровоизлияния в мозг, опухоли мозга, менингиты различного происхождения, прогрессивный паралич, спинную сухотку, рассеянный склероз. Примесь к ликвору крови всегда даёт положительные глобулиновые реакции.

Концентрация глюкозы в ликворе при различных заболеваниях отражена в табл..

Таблица  Изменения содержания глюкозы в ликворе при различных заболеваниях

Таблица  Изменения содержания глюкозы в ликворе при различных заболеваниях

Концентрация хлоридов в ликворе при различных заболеваниях приведена в табл..

Таблица  Изменение содержания хлоридов в ликворе при различных заболеваниях

Таблица  Изменение содержания хлоридов в ликворе при различных заболеваниях

Плеоцитоз — увеличение количества клеток в ликворе.

Обратите внимание

Незначительный плеоцитоз возможен при прогрессивном параличе, сифилисе, специфическом менингите, арахноидите, энцефалите, рассеянном склерозе, эпилепсии, опухолях, травме позвоночника и головного мозга.

Массивный плео-цитоз наблюдают при острых гнойных менингитах, абсцессе. Несмотря на то, что результаты исследования ликвора при различных типах менингитов могут быть одинаковыми, наиболее часто получают данные, приведённые в табл..

Лимфоцитарный плеоцитоз наблюдают в послеоперационный период при нейрохирургических операциях, хроническом воспалении оболочек мозга (туберкулёзный менингит, цистицеркозный арахноидит), вирусном, сифилитическом, грибковом менингоэнцефалите. Умеренный плеоцитоз с

преобладанием лимфоцитов возможен при локализации патологического процесса в глубине мозговой ткани.

Неизменённые нейтрофилы наблюдают при попадании свежей крови в ликвор при операциях на мозге, при остром воспалении; изменённые нейтрофилы — при затухании воспалительного процесса. Сочетание неизменённых и изменённых нейтрофилов указывает на обострение воспаления.

Резкое появление большого нейтро-фильного плеоцитоза возможно при прорыве абсцесса в ликворные пространства. При полиомиелите в начале заболевания преобладают нейтро-филы, а затем лимфоциты.

Таблица  Изменения показателей ликвора, характерные для бактериального, вирусного, грибкового и туберкулёзного менингита

Таблица  Изменения показателей ликвора, характерные для бактериального, вирусного, грибкового и туберкулёзного менингита

Важно

Эозинофилы выявляют при субарахноидальных кровоизлияниях, токсических, реактивных, туберкулёзных, сифилитических, эпидемических менингитах, опухолях, цистицеркозе головного мозга.

Плазматические клетки обнаруживают при энцефалите, туберкулёзном менингите, вялотекущем заживлении раны после операции.

Макрофаги выявляют при нормальном цитозе после кровотечения и при воспалительном процессе. Большое количество макрофагов в лик-воре можно обнаружить при её санации в послеоперационный период.

Отсутствие их при плеоцитозе — плохой прогностический признак.

Макрофаги с каплями жира в цитоплазме (зернистые шары) присутствуют в жидкости из мозговых кист и при некоторых опухолях (краниофарингиоме, эпендимоме).

Эпителиальные клетки определяют при новообразованиях оболочек, иногда при воспалительном процессе.

Клетки злокачественных опухолей можно обнаружить в ликворе желудочков мозга при метастазах рака и меланомы в кору больших полушарий, подкорковые отделы, мозжечок; бластные клетки — при нейролейкозе.

Эритроциты появляются в ликворе при внутричерепных геморрагиях (при этом значение имеет не столько их абсолютное количество, сколько нарастание при повторном исследовании).

Источник: https://medn.ru/statyi/pokazatelilikvo.html

Ссылка на основную публикацию
Adblock
detector